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Reconstitution du BPC-157 : solvant, concentration et conservation
Le guide pratique pour reconstituer le BPC-157 lyophilisé : solvant, étapes, tableaux de concentration et conservation.

Reconstitution du BPC-157 : solvant, concentration et conservation
Passer d’une poudre lyophilisée à une solution de concentration connue, sans abîmer le peptide. Le guide pas à pas, avec les tableaux de concentration pour les flacons de 5, 10 et 20 mg.
- Solvant : l’eau bactériostatique (eau stérile + 0,9 % d’alcool benzylique) est le choix standard pour un flacon utilisé sur plusieurs semaines.
- Calcul : concentration (mg/ml) = masse de peptide (mg) ÷ volume de solvant (ml). Un flacon de 5 mg dans 2 ml donne 2,5 mg/ml.
- Geste clé : faire couler le solvant le long de la paroi, puis faire tourner doucement le flacon. Jamais d’agitation.
- Conservation : entre 2 et 8 °C, à l’abri de la lumière, et utilisation dans les 4 à 6 semaines.
Le matériel
Il faut le flacon de BPC-157, un solvant stérile, de quoi prélever un volume précis et de quoi désinfecter les bouchons.
- Le flacon de BPC-157 lyophilisé, sorti du réfrigérateur 10 à 15 minutes avant pour qu’il revienne à température ambiante (cela évite la condensation à l’ouverture).
- De l’eau bactériostatique, en flacon scellé.
- Une seringue graduée stérile pour mesurer le volume de solvant au dixième de millilitre.
- Des tampons d’alcool pour désinfecter les bouchons en caoutchouc.
- Une étiquette pour noter la date et la concentration obtenue.
Quel solvant choisir ?
L’eau bactériostatique, dans la grande majorité des cas. L’eau stérile simple convient seulement si la solution est utilisée en une seule fois.
| Solvant | Composition | Quand l’utiliser |
|---|---|---|
| Eau bactériostatique | Eau stérile + 0,9 % d’alcool benzylique | Flacon prélevé plusieurs fois sur plusieurs semaines : l’alcool benzylique limite la prolifération bactérienne |
| Eau stérile pour préparations | Eau stérile sans conservateur | Usage unique, ou expérience sensible à l’alcool benzylique. À utiliser rapidement |
| Sérum physiologique | Chlorure de sodium à 0,9 % | Possible, mais sans conservateur : mêmes limites que l’eau stérile |
Le BPC-157 est un peptide soluble dans l’eau : il ne demande ni acide acétique, ni solvant organique. Une solution limpide en quelques secondes à une minute est le résultat attendu.

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Les étapes de la reconstitution
Désinfecter, prélever le volume choisi, le faire couler doucement sur la paroi du flacon, puis laisser la poudre se dissoudre en faisant tourner le flacon.
Préparer
Se laver les mains, sortir le flacon du froid, retirer les capsules plastiques et désinfecter les deux bouchons avec un tampon d’alcool. Laisser sécher.
Prélever
Prélever dans le flacon d’eau bactériostatique le volume exact choisi (par exemple 2,0 ml), en chassant les bulles d’air.
Verser
Piquer le bouchon du BPC-157 et faire couler le solvant lentement le long de la paroi en verre, jamais directement sur la poudre.
Dissoudre
Faire tourner doucement le flacon entre les doigts. Ne pas secouer. Si besoin, laisser reposer quelques minutes au réfrigérateur.
Contrôler
La solution doit être limpide et incolore, sans particules ni trouble. Une solution trouble est un signal d’alerte.
Étiqueter
Noter la date de reconstitution et la concentration obtenue, puis placer le flacon au réfrigérateur.
Tableaux de concentration
La concentration s’obtient en divisant la masse de peptide par le volume de solvant. Le même volume donne une solution deux fois plus concentrée avec un flacon de 10 mg qu’avec un flacon de 5 mg.
| Volume de solvant | Flacon 5 mg | Flacon 10 mg | Flacon 20 mg |
|---|---|---|---|
| 1 ml | 5 mg/ml | 10 mg/ml | 20 mg/ml |
| 2 ml | 2,5 mg/ml | 5 mg/ml | 10 mg/ml |
| 2,5 ml | 2 mg/ml | 4 mg/ml | 8 mg/ml |
| 3 ml | 1,67 mg/ml | 3,33 mg/ml | 6,67 mg/ml |
| 5 ml | 1 mg/ml | 2 mg/ml | 4 mg/ml |
Pour exprimer la concentration en microgrammes, multipliez par 1 000 : 2,5 mg/ml correspondent à 2 500 µg/ml, soit 250 µg dans 0,1 ml. Pour passer en concentration molaire, utilisez la masse moléculaire du BPC-157 (environ 1 419 g/mol) : 1 mg/ml correspond à environ 0,70 mM.
Pour éviter les erreurs de calcul, le calculateur de peptides fait la conversion automatiquement. Les unités sont détaillées dans notre article mg, mcg et UI.
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Reconnaître une solution normale
Une solution de BPC-157 bien préparée est limpide et incolore. Quelques petites bulles juste après la dissolution sont normales ; un trouble persistant ne l’est pas.
| Ce que l’on voit | Normal ? | Que faire |
|---|---|---|
| Solution limpide et incolore | Oui | Étiqueter et ranger au réfrigérateur |
| Petites bulles en surface | Oui | Laisser reposer quelques minutes |
| Un peu de poudre non dissoute | Souvent | Faire tourner doucement et patienter 5 à 10 minutes |
| Mousse abondante | À éviter | Signe de secousses : laisser retomber, ne pas recommencer |
| Trouble persistant, particules, couleur | Non | Ne pas utiliser |
Conservation après reconstitution
Au réfrigérateur entre 2 et 8 °C, à l’abri de la lumière, et à utiliser dans les 4 à 6 semaines avec de l’eau bactériostatique.
| État | Conditions | Durée indicative |
|---|---|---|
| Poudre lyophilisée | Congélateur (−20 °C) ou réfrigérateur, à l’abri de la lumière | Jusqu’à 24 mois |
| Solution (eau bactériostatique) | Réfrigérateur 2–8 °C, flacon fermé, à l’abri de la lumière | 4 à 6 semaines |
| Solution (eau stérile) | Réfrigérateur 2–8 °C | Quelques jours ; usage unique de préférence |
| Aliquotes congelées | −20 °C, en petits volumes | Plusieurs semaines, sans recongélation |
Si la solution doit durer plus longtemps, il vaut mieux la répartir en petits volumes (aliquotes) et les congeler séparément, plutôt que de congeler et décongeler plusieurs fois le même flacon. Chaque cycle de congélation abîme une partie du peptide. Tout est détaillé dans notre checklist de conservation.
Hygiène et contamination
Une solution utilisée sur plusieurs semaines peut être contaminée à chaque ouverture. L’eau bactériostatique limite le risque, mais ne remplace pas les bons gestes.
Les bactéries viennent surtout des mains, de l’air et des surfaces. Elles pénètrent dans le flacon par le bouchon, au moment du prélèvement. D’où trois réflexes : désinfecter le bouchon à l’alcool à chaque fois et le laisser sécher, utiliser un matériel neuf et stérile pour chaque prélèvement, et ne jamais poser le flacon ouvert ni toucher le caoutchouc du bouchon.
Enfin, une solution qui a été oubliée plusieurs heures à température ambiante, ou dont l’aspect a changé, doit être écartée. Le coût d’un nouveau flacon est toujours inférieur au risque d’un résultat faussé.
Les erreurs fréquentes
Secouer le flacon, verser le solvant directement sur la poudre et oublier de noter la concentration sont les trois erreurs les plus courantes.
- Secouer le flacon : mousse et dégradation possible. Faites tourner doucement.
- Viser la poudre : le jet direct peut projeter la poudre et former des agrégats. Visez la paroi.
- Changer de format sans recalculer : un flacon de 20 mg dans le même volume qu’un 5 mg donne une solution quatre fois plus concentrée.
- Laisser le flacon à température ambiante : remettez-le au froid dès la reconstitution terminée.
- Utiliser une solution trouble : un trouble ou des particules indiquent un problème. Ne pas l’utiliser.
Le cas d’un mélange BPC-157 + TB-500
Pour un flacon qui contient deux peptides, les gestes sont identiques. La différence est dans le calcul : chaque peptide a sa propre concentration.
Si un flacon contient 5 mg de BPC-157 et 5 mg de TB-500 et qu’on y ajoute 2 ml de solvant, la solution contient 2,5 mg/ml de chacun des deux peptides, et non 5 mg/ml d’un seul. L’erreur la plus fréquente consiste à diviser la masse totale du flacon comme s’il ne contenait qu’un peptide. Notre calculateur de peptides permet de faire le calcul pour chacun.
Petit lexique
Les mots qui reviennent le plus souvent quand on reconstitue un peptide.
| Terme | Définition |
|---|---|
| Lyophilisat | La poudre sèche obtenue par séchage à froid, sous vide. |
| Reconstitution | Le fait de dissoudre cette poudre dans un solvant. |
| Eau bactériostatique | Eau stérile contenant 0,9 % d’alcool benzylique, qui freine la croissance des bactéries. |
| Concentration | La quantité de peptide par unité de volume, par exemple en mg/ml. |
| mg et µg | 1 milligramme (mg) = 1 000 microgrammes (µg ou mcg). |
| Aliquote | Une petite portion de solution conservée à part. |
Les conversions sont détaillées dans notre article sur les unités mg, mcg et UI.

Acétate · flacons de 5 à 20 mg
FAQ : reconstituer le BPC-157
Avec quoi reconstituer le BPC-157 ?
Avec de l’eau bactériostatique pour un flacon utilisé sur plusieurs semaines, ou de l’eau stérile pour un usage unique. Le BPC-157 se dissout facilement dans l’eau.
Combien d’eau mettre dans un flacon de 5 mg ?
Le volume dépend de la concentration voulue. 2 ml donnent 2,5 mg/ml, 1 ml donne 5 mg/ml. Un volume plus grand donne une solution plus diluée, plus facile à prélever avec précision.
Faut-il secouer le flacon ?
Non. Il suffit de faire tourner doucement le flacon. L’agitation forte peut dégrader le peptide.
Combien de temps se conserve le BPC-157 reconstitué ?
Environ 4 à 6 semaines au réfrigérateur entre 2 et 8 °C avec de l’eau bactériostatique, à l’abri de la lumière.
Ma solution est trouble, est-ce normal ?
Non. Une solution de BPC-157 correctement reconstituée est limpide et incolore. Un trouble peut signaler une contamination, une dégradation ou un problème de qualité.
Combien de temps faut-il pour que la poudre se dissolve ?
En général quelques minutes. Si un peu de poudre reste visible, faire tourner doucement le flacon et patienter 5 à 10 minutes, sans le secouer.
Comment calculer la concentration d’un mélange BPC-157 + TB-500 ?
En divisant la masse de chaque peptide, et non la masse totale, par le volume de solvant. Chaque peptide a sa propre concentration.
Les petites bulles après la dissolution sont-elles normales ?
Oui. Elles disparaissent après quelques minutes de repos. Une mousse abondante, en revanche, signale que le flacon a été secoué.





