Peptides France

La L-carnitine au laboratoire : 600 ou 1 200 mg/mL, dilutions et conservation

Concentrations molaires, solution mère, dilutions, pipetage et conservation : le guide pratique de la L-carnitine en solution.

L-carnitine · Au laboratoire

La L-carnitine au laboratoire : 600 ou 1 200 mg/mL, dilutions et conservation

Comment manipuler une solution concentrée de L-carnitine, calculer les concentrations molaires, préparer une solution mère et des dilutions de travail, éviter les erreurs de pipetage et conserver un flacon à prélèvements multiples.

Mis à jour le 25 octobre 2026 · Lecture : 10 min · Rédaction : équipe Peptides France
En bref
  • Deux concentrations : 600 mg/mL (≈ 3,7 mol/L) et 1 200 mg/mL (≈ 7,4 mol/L), en flacons de 10 mL.
  • Pas de reconstitution : la solution est prête à l’emploi, il suffit de la diluer.
  • Une solution mère intermédiaire à 100 mM facilite toutes les dilutions de travail.
  • Prélèvements stériles et flacon au frais, à l’abri de la lumière.

Pourquoi une solution prête à l’emploi ?

Parce que la L-carnitine en poudre absorbe très vite l’humidité de l’air. En solution, elle est plus simple à doser et à conserver.

La L-carnitine base est extrêmement soluble dans l’eau, et sa poudre est très hygroscopique : laissée à l’air, elle devient collante, ce qui rend les pesées imprécises. Une solution titrée supprime ce problème. Elle permet aussi des prélèvements précis et reproductibles, à condition de bien calculer les dilutions.

Avantage

Pas de pesée

La concentration est connue d’avance, sans erreur liée à l’humidité.

Avantage

Pas de reconstitution

Aucun solvant à ajouter, aucune étape de dissolution.

Vigilance

Très concentrée

Il faut la diluer fortement avant tout usage expérimental.

Le matériel

Un outil de mesure précis et stérile, de l’eau stérile ou un tampon, des tubes et de quoi désinfecter le bouchon.

MatérielRôle
Flacon de L-carnitineLa solution concentrée, 600 ou 1 200 mg/mL
Outil de mesure stérile de précisionPrélever de petits volumes avec exactitude
Eau stérile ou tampon (PBS)Diluer la solution
Tubes stériles et étiquettesPréparer et identifier la solution mère et les dilutions
Lingettes à l’alcoolDésinfecter le bouchon avant chaque prélèvement

Pour la culture cellulaire, préférez l’eau stérile ou un tampon sans conservateur : l’alcool benzylique de la solution de reconstitution peut gêner certaines cellules.

600 ou 1 200 mg/mL en concentration molaire

Avec une masse de 161,2 g/mol, 600 mg/mL correspondent à environ 3,72 mol/L et 1 200 mg/mL à environ 7,44 mol/L.

Ce sont des concentrations très élevées : les expériences sur cellules utilisent généralement la L-carnitine entre quelques dizaines de micromolaires et quelques millimolaires, soit des milliers de fois moins. La formule de conversion est simple : concentration molaire = concentration massique ÷ masse molaire.

Concentration massiqueConcentration molaire
1 200 mg/mL≈ 7,44 mol/L
600 mg/mL≈ 3,72 mol/L
16,12 mg/mL100 mmol/L (solution mère conseillée)
0,161 mg/mL1 mmol/L
0,016 mg/mL100 µmol/L

Notre calculateur aide pour les conversions, et notre article sur les unités pour éviter les confusions entre mg et mcg.

Une série de tubes transparents avec un liquide de moins en moins lumineux

Préparer une solution mère à 100 mM

Passer par une solution intermédiaire à 100 mM évite de pipeter des volumes minuscules de solution concentrée et rend les calculs simples.

Solution de départVolume à préleverEau stérile à ajouterRésultat
600 mg/mL27 µL973 µL1 mL à ≈ 100 mM
600 mg/mL269 µL9,73 mL10 mL à ≈ 100 mM
1 200 mg/mL13,4 µL986,6 µL1 mL à ≈ 100 mM
1 200 mg/mL134 µL9,87 mL10 mL à ≈ 100 mM

Pour plus de précision, préparez un volume plus grand (10 mL) : les erreurs relatives de pipetage sont plus faibles sur 269 µL que sur 27 µL. Mélangez doucement par retournement, puis répartissez la solution mère en portions.

Les dilutions de travail

À partir d’une solution mère à 100 mM, chaque millimolaire final correspond à 10 µL par millilitre de milieu.

Concentration finale viséeSolution mère à 100 mM pour 1 mLDilution
5 mM50 µL1/20
1 mM10 µL1/100
0,5 mM5 µL1/200
100 µM1 µL (ou 10 µL d’une dilution à 10 mM)1/1 000
  • Préparer au dernier moment les dilutions les plus faibles.
  • Témoin : même volume d’eau ou de tampon, sans carnitine.
  • Plusieurs concentrations pour rechercher une relation dose-réponse.
Une goutte épaisse et lumineuse qui s'étire lentement au bout d'une pointe

Pipeter une solution concentrée

Les solutions très concentrées sont plus visqueuses que l’eau. Un pipetage lent, éventuellement en mode inverse, améliore la précision.

À 1 200 mg/mL, la solution contient plus de soluté que d’eau en masse : elle s’écoule plus lentement et adhère davantage aux parois. Aspirez lentement, attendez une seconde avant de sortir la pointe, et essuyez l’extérieur de la pointe si une goutte y reste. La technique du pipetage inverse (aspirer un peu plus que nécessaire et ne distribuer que le volume voulu) limite les erreurs avec les liquides visqueux.

1

Lentement

Aspirer et distribuer sans à-coups.

2

Attendre

Une seconde avant de sortir la pointe du liquide.

3

Rincer

Rincer la pointe dans le diluant pour récupérer tout le volume.

Points de vigilance dans le milieu

Aux concentrations de travail habituelles, la L-carnitine ne pose pas de problème. Aux fortes concentrations, il faut surveiller l’osmolarité et le pH.

Ajoutée à plusieurs millimolaires, la carnitine augmente légèrement l’osmolarité du milieu de culture. Ce n’est en général pas gênant jusqu’à quelques millimolaires, mais un témoin d’osmolarité (par exemple avec un composé inerte à la même concentration) peut être utile pour les concentrations élevées. Vérifiez aussi le pH final si vous ajoutez de grands volumes d’une solution peu tamponnée.

Concentration finaleVigilance
Jusqu’à 1 mMAucune particulière
1 à 10 mMPenser à un témoin d’osmolarité
Au-delà de 10 mMContrôler osmolarité et pH

Prélever dans un flacon multidose

Le flacon de 10 mL permet de nombreux prélèvements. Chacun doit se faire stérilement, pour éviter de contaminer la solution restante.

  • Désinfecter le bouchon à l’alcool et laisser sécher avant chaque prélèvement.
  • Matériel neuf et stérile à chaque fois.
  • Ne jamais réintroduire un excès de solution dans le flacon.
  • Noter la date de première ouverture sur le flacon.

Conserver

Le flacon se conserve fermé, au frais et à l’abri de la lumière, selon les indications de l’étiquette. Les dilutions se préparent de préférence au moment de l’usage.

FormeOù ?Précautions
Flacon non ouvertSelon l’étiquette, au fraisÀ l’abri de la lumière
Flacon entaméRéfrigérateur, entre 2 et 8 °CPrélèvements stériles, quelques semaines au plus
Solution mère à 100 mMCongélateur, en portionsUne portion par expérience, sans recongeler
Dilutions de travailPréparées le jour mêmeNe pas conserver

La L-carnitine est une molécule chimiquement stable en solution, mais le risque principal est la contamination microbienne d’un flacon souvent ouvert. Les règles générales sont dans notre guide de conservation.

Les erreurs à éviter

La plupart des erreurs viennent des calculs et du pipetage de la solution concentrée.

Erreur

Utiliser la solution pure

À 3,7 ou 7,4 mol/L, elle doit être diluée des milliers de fois.

Erreur

Confondre les flacons

600 et 1 200 mg/mL : le facteur de dilution change du simple au double.

Erreur

Pipeter trop vite

La viscosité fausse les petits volumes.

Erreur

Contaminer le flacon

Un prélèvement non stérile compromet tout le flacon.

Erreur

Oublier le témoin

Sans témoin, impossible d’isoler l’effet de la carnitine.

Erreur

Mélanger les formes

Tartrate ou acétyl-carnitine n’ont pas la même masse : les calculs changent.

Pour les différences de masse entre les formes, voir les formes de L-carnitine.

Quelle concentration choisir ?

Les deux flacons contiennent la même molécule. Le 1 200 mg/mL revient moins cher au gramme ; le 600 mg/mL est un peu plus simple à pipeter.

FormatQuantité de L-carnitinePrixPrix au gramme
600 mg/mL · 10 mL6 g25 €≈ 4,17 €
1 200 mg/mL · 10 mL12 g40 €≈ 3,33 €

Dans les deux cas, un seul flacon permet de préparer des centaines de millilitres de solution mère à 100 mM : la quantité n’est presque jamais le facteur limitant.

Un exemple de protocole complet

Pour tester l’effet de la L-carnitine sur l’oxydation des acides gras dans des cellules en culture, voici un enchaînement type.

1

Solution mère

Préparer 10 mL à 100 mM à partir du flacon, puis répartir en portions.

2

Plan de plaque

Prévoir un témoin, trois concentrations (0,1 ; 0,5 et 2 mM) et des répétitions.

3

Dilutions

Diluer la solution mère dans le milieu le jour même.

4

Exposition

Ajouter les dilutions aux cellules pour la durée prévue.

5

Mesure

Consommation d’oxygène ou oxydation d’un acide gras marqué.

6

Carnet

Noter le lot, les volumes, les dates et les observations.

Les mesures d’oxydation des acides gras sont détaillées dans L-carnitine et mitochondries.

FAQ : la L-carnitine au laboratoire

Faut-il reconstituer la L-carnitine ?

Non. Elle est fournie en solution prête à l’emploi, à 600 ou 1 200 mg/mL. Il suffit de la diluer.

Quelle est la concentration molaire d’une solution à 600 mg/mL ?

Environ 3,72 mol/L, avec une masse molaire de 161,2 g/mol. À 1 200 mg/mL, environ 7,44 mol/L.

Comment préparer 1 mL de L-carnitine à 100 mM ?

Prélevez 27 µL de solution à 600 mg/mL (ou 13,4 µL à 1 200 mg/mL) et complétez à 1 mL avec de l’eau stérile.

Avec quoi diluer la L-carnitine ?

Avec de l’eau stérile ou un tampon comme le PBS. Pour la culture cellulaire, évitez les solvants contenant un conservateur.

Comment conserver un flacon entamé ?

Au réfrigérateur, à l’abri de la lumière, avec des prélèvements toujours stériles, et pendant quelques semaines au plus.

Quelle différence entre les flacons de 600 et 1 200 mg/mL ?

La même molécule, en concentration double. Le 1 200 mg/mL est moins cher au gramme ; le 600 mg/mL est un peu plus facile à pipeter.

Pour aller plus loin

Avertissement — Cet article décrit des manipulations de laboratoire. Les solutions de L-carnitine proposées par Peptides France sont des réactifs de recherche destinés exclusivement au laboratoire ; elles ne sont pas destinées à la consommation humaine ou animale.

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